Elf labb
I Johan Elf forskargrupp arbetar vi på att förstå på vilken detaljnivå man måste beskriva cellens fysikalisk kemi för att kunna göra sammanhängande modeller av livet på molekylärnivå. Fokus ligger på baktericellens centrala processer; transkriptionsreglering, proteinsyntes och celldelning. Vi utför kvantitativa förutsägelser baserade på fysikaliska modeller, och testar dessa med hjälp av avancerade experimentella tekniker. Det är viktigt att våra metoder är tillräckligt noggranna för att kunna testa alla extrema aspekter. Vi lägger därför mycket tid och kraft på att utveckla känsliga biofysiska mätmetoder för att kunna studera enskilda makromolekyler i levande celler med tillräckligt hög spatial och temporal upplösning. Forskningen bygger på ett nära samarbete mellan gruppens fysiker, biologer, kemister, programmerare och ingenjörer som tillsammans överbrygger klyftan mellan biokemi och fysiologi.
Populärvetenskaplig presentation
I Johan Elfs forskargrupp jobbar ett 20-tal fysiker, ingenjörer, datavetare, molekylärbiologer, matematiker och mikrobiologer tillsammans med att utveckla tekniker för att testa olika förklaringsmodeller för hur cellens processer fungerar på molekylnivå. En del av arbetet består i att formulera matematiska teorier, som gör det möjligt att göra tydliga förutsägelser och testa modeller. Den största delen av arbetet ligger dock på att utveckla de experimentella teknikerna så att de blir tillräckligt känsliga för att testa specifika förutsägelser.
Det finns massor av tekniska utmaningar. Den allra största är att märka proteinerna med fluorescerande ämnen utan att proteinet rör sig onormalt , slutar fungera eller fungerar på annat sätt än det normalt skulle göra. Därför arbetar gruppen med att utveckla ny teknik för att byta ut en enskild aminosyra i ett specifikt protein i cellen till en fluorescerande aminosyra. De nya märkningsmetoderna utvecklas parallellt med en ny typ av extremt snabbt mikroskop för att kunna studera enskilda proteiners interaktioner med dna i levande celler ned till någon tusendels sekund.
Den senaste tidens utvecklingen av fluorescensmikroskopi som har tagit ljusmikroskopin till nanodimensioner och som belönades med Nobelpriset i kemi 2014 betyder mycket för forskningen i labbet. Om en cell liknas vid en stad kan man säga att det för tiotalet år sedan bara var möjligt att se husen, inte bilarna eller människorna. I dag kan vi däremot följa hur de enskilda människorna rör sig och vad de gör i staden. Det ger förstås helt nya möjligheter att förstå hur staden fungerar.
Johan Elf har gjort flera uppmärksammade upptäckter med hjälp av vidareutvecklingar av den Nobelprisbelönade mikroskopitekniken. En gäller hur ett reglerprotein, en transkriptionsfaktor, snabbt hittar och fäster på rätt ställe på dna-spiralen när en gen ska aktiveras. Det har funnits många teorier om detta, men med den nya mikroskopitekniken kan man se hur det verkligen går till när en transkriptionsfaktor hittar rätt plats bland miljontals alternativa bindningsställen längs dna-spiralen.
Man kan likna reglerproteinet vid en supersnabb bibliotekarie som själv, utan stöd av något datoriserat register och i trängsel med massor av andra bibliotekarier och biblioteksbesökare, lyckas leta rätt på en av miljontals böcker som står osorterade i många tusen likadana hyllor. På mindre än en tusendels sekund scannar transkriptionsfaktorn av cirka 40 dna-byggstenar, baspar, genom att glida längs dna-strängen. Om inte rätt dna-sekvens finns där lossnar den och börjar testa nya ställen tills den når fram och fäster intill den gen som ska aktiveras.
Det till synes planlösa letandet längs korta bitar av dna-spiralen är så smidigt och så snabbt att det räcker med fem exemplar av styrproteinet för att ett av dem inom en minut ska hitta fram till och aktivera genen. Studien bekräftar modellen för hur generna hittas av sina transkriptionsfaktorer som Uppsalaforskaren Otto Berg på teoretiska grunder presenterade för mer än 30 år sedan.
Men det är inte alltid så att de detaljerade mätningarna av cellens inre liv bekräftar vedertagna modeller för hur biologin i cellen fungerar. En gängse modell säger att en gen är avstängd så länge som en hämmande transkriptionsfaktor är bunden till dna-strängen. Johan Elf kunde nyligen påvisa att det finns avvikelser mellan hur länge transkriptionsfaktorn binder och hur länge genen är inaktiv. Sådana fynd är roligast eftersom som de strider mot det förväntade och öppnar för ny forskning.
Forskning
Vår övergripande ambitionen är att överbrygga klyftan mellan kvantitativa fysiska modeller och biologiska observationer i syfte att identifiera och reda ut inkonsekvenser i vår nuvarande förståelse av livet på molekylärnivå. Vi är särskilt intresserade av hur viktiga steg i transkription, translation och replikering regleras i den intracellulära miljön och på vilken fysisk detaljnivå dessa processer behöver modelleras för att vi ska kunna beskriva deras funktion i den levande cellen.
Gruppmedlemmar
Publikationer
Antibiotic perseverance increases the risk of resistance development
Ingår i Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2023
Can molecular dynamics be used to simulate biomolecular recognition?
Ingår i Journal of Chemical Physics, 2023
Ingår i PloS Computational Biology, 2023
Real-time single-molecule 3D tracking in E. coli based on cross-entropy minimization
Ingår i Nature Communications, 2023
Ingår i Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2023
Ingår i Journal of Physical Chemistry B, s. 9971-9984, 2022
Direct measurements of mRNA translation kinetics in living cells
Ingår i Nature Communications, 2022
Rapid antibiotic susceptibility testing and species identification for mixed samples
Ingår i Nature Communications, 2022
Sequence specificity in DNA binding is mainly governed by association
Ingår i Science, s. 442-445, 2022
Imaging-based screens of pool-synthesized cell libraries
Ingår i Nature Methods, s. 358-365, 2021
More Than Just Letters and Chemistry: Genomics Goes Mechanics
Ingår i TIBS -Trends in Biochemical Sciences. Regular ed., s. 431-432, 2021
RecA finds homologous DNA by reduced dimensionality search
Ingår i Nature, s. 426-429, 2021
The highly dynamic nature of bacterial heteroresistance impairs its clinical detection
Ingår i Communications Biology, 2021
DNA surface exploration and operator bypassing during target search
Ingår i Nature, s. 858-+, 2020
Time-resolved imaging-based CRISPRi screening
Ingår i Nature Methods, s. 86-92, 2020
Ingår i Journal of Physical Chemistry B, s. 3576-3590, 2019
Rotational and Translational Diffusion of Proteins as a Function of Concentration
Ingår i ACS Omega, s. 20654-20664, 2019
Ingår i EMBO Journal, 2018
Structure-guided approach to site-specific fluorophore labeling of the lac repressor LacI
Ingår i PLOS ONE, 2018
tRNA tracking for direct measurements of protein synthesis kinetics in live cells
Ingår i Nature Chemical Biology, s. 618-626, 2018
Variational Algorithms for Analyzing Noisy Multistate Diffusion Trajectories
Ingår i Biophysical Journal, s. 276-282, 2018
Antibiotic susceptibility testing in less than 30 min using direct single-cell imaging
Ingår i Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, s. 9170-9175, 2017
Ingår i ACS Photonics, s. 233-255, 2017
Ingår i CELL SYSTEMS, s. 144-146, 2017
In situ genotyping of a pooled strain library after characterizing complex phenotypes
Ingår i Molecular Systems Biology, 2017
Kinetics of dCas9 Target Search in Escherichia Coli
Ingår i Biophysical Journal, 2017
Kinetics of dCas9 target search in Escherichia coli
Ingår i Science, s. 1420-1423, 2017
Ingår i Biophysical Journal, 2017
Nanometer resolution imaging and tracking of fluorescent molecules with minimal photon fluxes
Ingår i Science, s. 606-612, 2017
Pointwise error estimates in localization microscopy
Ingår i Nature Communications, 2017
Real- Time Single Protein Tracking with Polarization Readout using a Confocal Microscope
Ingår i Biophysical Journal, 2017
Ingår i Developmental Cell, s. 5-6, 2016
Hypothesis: Homologous Recombination Depends on Parallel Search
Ingår i CELL SYSTEMS, s. 325-327, 2016
In Vivo Measurements of Protein Synthesis Kinetics using Single-Molecule Tracking of E.Coli tRNAS
Ingår i Biophysical Journal, 2016
Ingår i Molecular Microbiology, s. 767-777, 2016
Segmentation and track-analysis in time-lapse imaging of bacteria
Ingår i IEEE Journal on Selected Topics in Signal Processing, s. 174-184, 2016
Simulated single molecule microscopy with SMeagol
Ingår i Bioinformatics, s. 2394-2395, 2016
Ingår i CELL SYSTEMS, s. 219-220, 2016
The helical structure of DNA facilitates binding
Ingår i Journal of Physics A, 2016
The Synchronization of Replication and Division Cycles in Individual E. coli Cells
Ingår i Cell, s. 729-739, 2016
Ingår i Biophysical Journal, 2015
Ingår i Nucleic Acids Research, s. 3454-3464, 2015
Ingår i Nucleic Acids Research, s. 3454-3464, 2015
Ingår i Nature Genetics, s. 405-+, 2014
Ingår i Biophysical Journal, 2014
Ingår i Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, s. 11413-11418, 2014
Stochastic reaction–diffusion processes with embedded lower-dimensional structures
Ingår i Bulletin of Mathematical Biology, s. 819-853, 2014
A Bayesian Approach to Single Particle Tracking Analysis
Ingår i Biophysical Journal, 2013
Extracting intracellular diffusive states and transition rates from single-molecule tracking data
Ingår i Nature Methods, s. 265-269, 2013
Ingår i Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Biological Sciences, 2013